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DAP-seq测序(DNA亲和纯化测序)!

原文链接:DAP-seq测序(DNA亲和纯化测序)!

DAP-seq

<font style="color:rgb(53, 148, 247);background-color:rgba(27, 31, 35, 0.05);">DAP-seq</font>的全称是<font style="color:rgb(53, 148, 247);background-color:rgba(27, 31, 35, 0.05);">DNAaffinity purification purification sequencing</font>,即<font style="color:rgb(53, 148, 247);background-color:rgba(27, 31, 35, 0.05);">DNA亲和纯化测序</font>,该技术通过体外表达转录因子鉴定转录因子结合位点(Transcription factor binding site,TFBS),不受抗体和物种限制,且具有高通量的优势,该技术自问世以来,已被广泛应用于转录调控和表观组学的研究。

DAP-seq实验原理

体外表达的蛋白和DNA进行亲和纯化,将与蛋白结合的DNA洗脱后进行高通量测序。其基本过程是将编码转录因子的CDS序列构建到含有亲和标签(Halo-Tag)的载体中,构建蛋白表达载体,进行体外蛋白表达,形成转录因子和亲和标签的融合蛋白;提取样品的基因组DNA,构建DNA文库,然后将体外表达的带有亲和标签的转录因子和DNA文库进行结合,随后把结合的DNA洗脱后上机测序。

DAP-seq优点

<font style="color:rgb(53, 148, 247);background-color:rgba(27, 31, 35, 0.05);">DAP-seq成功将体内结合实验转移到体外,解决了ChIP抗体制备的困扰,极大的提高 DNA Binding Site发现的效率</font>。 DAP-seq不仅能够超高通量查找TFBS,还能深入了解众多TF的生物学特性和结合位点结构,在任何有机体的顺反和表观研究中表现出巨大的价值。

具体方法为:通过体外蛋白表达技术,表达出带有标签的转录因子,和基因组 DNA 文库在体外进行结合,然后分离出所有与转录因子结合的 DNA,再使用高通量测序,找到转录因子的结合位点。

原文链接:DAP-seq测序(DNA亲和纯化测序)!

缺点

  • 很多TF在体内起作用必须要有其他配体蛋白的协助,但在体外环境下,缺乏这些条件;体外环境下,蛋白翻译后无法正常折叠或形成多聚物,从而无法行使在体内环境类似的功能。这与TF的类型(即TF家族)高度相关,因此,如果想用DAP-seq研究某个目标TF,则可以先查询在之前的研究中,该TF隶属家族的成功率如何,从而预估目标TF的实验成功率。
  • DAP-seq无法检测组蛋白修饰、染色体开放程度等因素对TF作用的影响,因此,DAP-seq不适用于研究TF与DNA作用的动态变化,研究静态TFBS时,一个物种只需做一次。

试验流程

分析流程

例子

文章:ZmGI2 regulates flowering time through multiple flower development pathways in maize

  • 作者利用Ac-Ds转座子系统构建zmgi2突变体,发现zmgi2突变体在长日照(LD)条件下比野生型开花更早,而在短日照(SD)条件下开花时间的差异并不明显。

ZmGI2调控玉米开花时间(Li et al., 2023)。(a)zmgi2突变体中Ds转座子插入位置的示意图;(b)在LD和SD条件下zmgi2突变体和WT植株的表型;(c)在LD和SD条件下zmgi2突变体和WT植株开花的天数;(d)ZmGI2在第3至第9片完全展开的叶片和茎尖分生组织(SAM)中的表达模式;(e)ZmGI2在SAM中的表达显示出昼夜节律。

作者利用RNA-seq和DAP-seq技术探究ZmGI2的靶基因,发现ZmGI2可以与AGTTGTAG和GGTAAACAAGGT这两个基序(Motif)特异性结合(图4),进一步利用凝胶迁移实验(EMSA)和双荧光素酶报告基因实验(Dual-LUC)证明ZmGI2通过直接结合ZmVOZs、ZmZCN8和ZmFPF1的上游区域来抑制这些基因的表达,并直接结合ZmARR11、ZmDOF和ZmUBC11的上游区域来促进这些基因的表达,从而延缓开花。

DAP-seq技术分析ZmGI2的结合位点(Li et al., 2023)。(a)ZmGl2在酵母中的转录活性分析;(b)使用Gal4/UAS系统对ZmGI2的转录活性进行瞬时测定;(c)在玉米原生质体中瞬时表达ZmGI2-GFP融合蛋白的核定位;(d)ZmGI2的两个结合基序;(e)两个生物学重复的结合峰数量;(f)ZmGI2结合位点在玉米基因组中的分布;(g)DAP-seq和RNA-seq结果之间的重叠基因;(h)EMSA结果证实ZmGI2与GGTAAACAAGGTA和AGTTGTAG体外结合。


参考:

  1. Bartlett A, O’Malley R C, Huang S C, et al. Mapping genome-wide transcription-factor binding sites using DAP-seq[J]. Nature Protocols, 2017, 12(8): 1659-1672.
  2. Li Z, Gao F, Liu Y, et al. ZmGI2 regulates flowering time through multiple flower development pathways in maize. Plant Science. 2023, 332: 111701.
  3. https://m.baidu.com/bh/m/detail/ar_10318223045417311191
  4. https://www.seqhealth.cn/productinfo/2208683.html
  5. http://www.igenebook.com/pro_43862233.html
  6. https://www.zoonbio.com/antibody/dap-seq-service.html
  7. https://www.biomart.cn/infosupply/113316386.htm

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