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生物化学(实验流程) PCR : 植物提取RNA 电泳评估RNA纯度

文章目录

    • RNA提取
        • 一、实验步骤总览
        • 二、工具和耗材
        • 三、操作流程
          • 清洗清除
          • 预备和研磨
          • RNA 提取
          • RNA 电泳
    • 检测RNA完整性\评估RNA纯度

RNA提取

  • 参考视频链接
一、实验步骤总览

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二、工具和耗材
  • R1-600 总 RNA 提取试剂箱
  • RNA 专用离心筒(DEPC 处理)
  • RNA 专用枪头和移液枪
  • RNA 专用研磨棒和研磨针
  • 无 RNase 清洗副耗品(比如 RNA Zap)
  • 液氧,无水乙醇,75% 乙醇(DEPC 处理水配笔)
  • 漏水槽,风扇等
  • 雪光积存器,4℃ 和 -80℃ 冷冻箱
三、操作流程
清洗清除
  1. 研磨棒、研磨针和钥匙用无水乙醇洗净,烧亮焰消毒,消除 RNase 溃染;
  2. 清洗完成后,将工具预冷至液氧温度。
预备和研磨
  1. 将植物样品放入研磨针,加入液氧,硬化样品;
  2. 带上棉手套,快速研磨,注意全程保持低温,随时补充液氧,防止 RNA 降解;
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  • 哈哈,有没有人拿这个去做个液氮冰激凌
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RNA 提取
  1. 快速转移至离心筒,加入1 mL RNA 提取试剂,混合,带套需要先冷藏;
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  2. 应用 200 μL 氯仿(或替代物),先混合,然后等待 3 分钟,进行离心:12,000 rpm,4℃,10 分钟;

  3. 将上层 RNA 水相小心吸取,907 移入新筒,加入等体积异体酒,混合,离心:12,000 rpm,10 分钟;
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  4. 置换上清液,添加 75% 乙醇,重复离心:12,000 rpm,5 分钟;
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  5. 打开筒盖,吸出乙醇(注意,不要吸到底下的白色沉淀),风扇吹干,确保乙醇全部振去;

  6. 加入 30 μL RNase-Free 水,混合溶解 RNA,筒保 4℃ 短期存放,-80℃ 长期存放。

RNA 电泳

凝胶准备

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样品准备

  • 在RNA样品中加入RNA Loading Buffer。

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加样与电泳

  • 将凝胶放入电泳槽,加入足够的电泳缓冲液覆盖凝胶。
  • 用微量枪向凝胶加样孔中缓慢加样。
  • 一般每孔上样 0.5~2 μg RNA。
  • 同时上RNA Marker(如RiboRuler RNA Ladder)。

检测RNA完整性\评估RNA纯度

  • 电泳后应出现清晰的28S和18S rRNA条带,其中28S条带强度约为18S条带的2倍。如果条带模糊、拖尾,说明RNA降解,不适合下游实验。

在这里插入图片描述

  • 这是因为真核细胞中的核糖体RNA(rRNA)在细胞中的天然比例所决定的,RNA中大部分都是rRNA,主要有以下几种:
rRNA种类大小(真核)归属主要功能
28S rRNA~5000 nt大亚基(60S)蛋白合成
18S rRNA~1900 nt小亚基(40S)蛋白合成
5.8S rRNA~160 nt大亚基(60S)蛋白合成
5S rRNA~120 nt大亚基(60S)蛋白合成
http://www.dtcms.com/a/273467.html

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